1、转染前1天将0.5~2×105细胞接种于24孔培养板,并加入500ul不含抗生素的*培养基,以保证转染时细胞汇合达90~95%。
2、准备复合物
(1) 将0.8ug DNA稀释于50ul无血清无抗生素的培养液中轻轻浑匀。
(2) 将2ul Lipofectamine2000稀释于50ul无血清无抗生素的培养液中,轻轻浑匀,室温孵育5分。注意:必须在25分内进行。
(3) 5分后将它们混合,并轻轻浑匀,室温孵育20分。
3、吸去培养板的培养基,用PBS或无血清培养基()清洗细胞2次。
4、将复合物(总体积100ul)加入培养孔,前后摇动培养板使其分布均匀。
5、将细胞放入培养箱孵育4~6h后,可以更换含血清培养液去除复合物(也可不用)。
6、24~48h后可以观察转入基因表达情况。
7、稳定转染:换含血清培养基24h后将细胞以1:10(或更高比例)传代,1天后更换筛选培养基筛选。
8、优化:要保证细胞汇合率达90~95%(比较高);DNA/ Lipofectamine2000比率1:0.5~1:5,一般细胞1:2~3.
脂质体2000转染法的主要优点是可用将DNA转染至悬浮或者铁壁细胞培养、转染效率相对较高、对基因片段大小的限制较小等,但是
阳离子脂质体2000对细胞的毒性相对较高,为了防止其毒性,要摸索好如下实验条件:脂质体2000与质粒的比例、细胞转染时间等。